
11.1 מדוע נדרשת שיטת הפרדה?
עד כה עסקנו בעיקר בחומרים בודדים או במערכות פשוטות יחסית. הנחנו, פעם אחר פעם, שבמכשיר נמצא חומר אחד שאותו אנו מנסים לזהות או לאפיין. אולם בעולם האמיתי הנחה זו כמעט אף פעם אינה מתקיימת: רוב הדגימות אינן טהורות.
חשבו על דוגמאות מן החיים ומן המעבדה:
- מי נהר;
- דלק;
- שמן;
- פולימר מסחרי;
- צבע (ציפוי);
- תמצית צמח;
- תמיסת ציפוי.
בכל אחד מאלה מדובר בתערובת המכילה עשרות, מאות ולעיתים אלפי רכיבים שונים.
נניח כעת שאנו מכניסים תערובת כזו ישירות לתוך ספקטרומטר — למשל ל-MS שלמדנו בפרק הקודם. מה יקרה? כל הרכיבים יתייננו ויתפרקו בו-זמנית, והאותות שלהם ייערמו זה על זה. נקבל ספקטרום מורכב להחריד, שבו בלתי אפשרי לדעת איזו פסגה שייכת לאיזה רכיב — תוצאה שקשה או בלתי אפשרי לפרש.
המסקנה ברורה: לפני הזיהוי יש לעיתים קרובות צורך להפריד תחילה את רכיבי התערובת זה מזה, ורק אז לזהות כל אחד בנפרד. זוהי בדיוק מטרתה של הכרומטוגרפיה. כפי שנראה, היא אינה מתחרה בשיטות הזיהוי שלמדנו אלא מקדימה ומשלימה אותן.
11.2 מהי כרומטוגרפיה?
כרומטוגרפיה היא משפחה של שיטות הפרדה — לא שיטה אחת, אלא עיקרון משותף הממומש בדרכים רבות. העיקרון עצמו פשוט להפליא:
רכיבים שונים בתערובת נעים דרך המערכת במהירויות שונות, ולכן נפרדים זה מזה.
ברגע שהרכיבים נפרדו במרחב או בזמן, נפתחות שלוש אפשרויות:
- לזהות כל רכיב בנפרד;
- למדוד את כמותו;
- לאסוף אותו בנפרד (לצורכי טיהור או הכנה).
כל שאר הפרק אינו אלא פירוט של השאלה כיצד גורמים לרכיבים שונים לנוע במהירויות שונות, וכיצד מנצלים זאת.
11.3 מקור השם
המילה “כרומטוגרפיה” מורכבת משתי מילים יווניות: Chroma (צבע) ו-Graphein (לכתוב) — כלומר, “כתיבה בצבע”.
השיטה פותחה בתחילת המאה העשרים על ידי הבוטנאי הרוסי מיכאיל צווט (Tsvet). צווט הפריד פיגמנטים צמחיים על גבי עמודה מלאה באבקה, וראה כיצד הם נעים במהירויות שונות ויוצרים פסים צבעוניים נפרדים לאורך העמודה. מן הפסים הצבעוניים האלה נולד השם.
כדאי לזכור את התמונה הזו, שכן היא ממחישה בדיוק את העיקרון. ובכל זאת, אירוניה קטנה: כיום הרוב המוחלט של היישומים הכרומטוגרפיים אינם קשורים כלל לצבע — הרכיבים המופרדים לרוב חסרי צבע לחלוטין, ומתגלים באמצעים אחרים. השם נותר כעדות היסטורית למוצא השיטה. (במאמר מוסגר: שם משפחתו של צווט, “צווט”, פירושו ברוסית “צבע” — צירוף מקרים מתאים במיוחד לממציא הכרומטוגרפיה.)
חלק א’: העיקרון הכללי
11.4 הפאזה הנייחת והפאזה הניידת
בלב כל שיטה כרומטוגרפית עומדים שני מרכיבים, ומתח מתמיד ביניהם:
הפאזה הנייחת (Stationary phase) — חומר שאינו נע. הוא קבוע במקומו לאורך המערכת (למשל, ציפוי על דופן עמודה, או אבקה ממלאת).
הפאזה הניידת (Mobile phase) — נוזל או גז הזורם דרך המערכת ונושא עמו את הדגימה.
כאשר תערובת הדגימה נישאת בפאזה הניידת לאורך הפאזה הנייחת, כל רכיב מתחלק בין שתי הפאזות — חלק ממנו נצמד באופן זמני לפאזה הנייחת, וחלק ממשיך לנוע עם הניידת. הנקודה המכרעת: חומרים שונים מתחלקים באופן שונה. רכיב הנמשך חזק לפאזה הנייחת יבלה יותר זמן “תקוע” ויתקדם לאט; רכיב הנמשך אליה מעט יזרום כמעט חופשי ויתקדם מהר. מהבדל זה — ורק ממנו — נובעת כל ההפרדה.
11.5 מקדם החלוקה
ניתן לכמת את “ההעדפה” הזו. עבור רכיב הנמצא בו-זמנית בשתי הפאזות, מגדירים את מקדם החלוקה (Partition coefficient):
כאשר הוא ריכוז הרכיב בפאזה הנייחת (stationary) ו- ריכוזו בפאזה הניידת (mobile).
המשמעות פשוטה: גדול פירושו שהרכיב מעדיף בבירור את הפאזה הנייחת — הוא יתעכב ויצא מאוחר. קטן פירושו שהרכיב מעדיף את הניידת — הוא יזרום מהר ויצא מוקדם. מאחר שלכל רכיב משלו, לכל רכיב מהירות התקדמות משלו — וזה מה שמפריד ביניהם.
11.6 כיצד נוצרת הפרדה?
נחבר את הקצוות: רכיב המעדיף את הפאזה הניידת (K קטן) ינוע במהירות וייצא ראשון. רכיב המעדיף את הפאזה הנייחת (K גדול) יעוכב וייצא מאוחר יותר. ככל שהמסע דרך המערכת ארוך יותר, כך פער הזמן בין הרכיבים גדל — ולאחר זמן מה הם נפרדים לחלוטין, כל אחד מגיע לקצה בזמנו שלו.
11.7 דוגמה אינטואיטיבית
תמונה פשוטה תבהיר הכל. נניח שני אנשים יוצאים יחד מקצה אחד של עיר אל הקצה השני, באותו מסלול. האחד עוצר בכל בית קפה בדרך; השני הולך ישירות אל יעדו, בלי לעצור. כעבור שעה הם יימצאו במקומות שונים לחלוטין — ה”ישיר” הרחק לפנים, ה”עוצר” הרחק מאחור.
זהו בדיוק עקרון הכרומטוגרפיה. בתי הקפה הם הפאזה הנייחת (נקודות שבהן אפשר “להיתקע”); הליכה ברחוב היא הפאזה הניידת. ה”עוצר” הוא רכיב בעל K גדול; ה”ישיר” הוא רכיב בעל K קטן. ההבדל בנטייה לעצור — הוא שמפריד ביניהם.
חלק ב’: כרומטוגרפיית שכבה דקה (TLC)
11.8 מהי TLC?
Thin Layer Chromatography — כרומטוגרפיית שכבה דקה. זוהי אחת השיטות הפשוטות, הזולות והמהירות ביותר במשפחה, ולכן נקודת כניסה מצוינת להבנת העיקרון בידיים.
הפאזה הנייחת היא שכבה דקה של חומר סופח (אדסורבנט), מרוחה על גבי לוח (מזכוכית, אלומיניום או פלסטיק). החומרים הסופחים הנפוצים הם סיליקה או אלומינה. הפאזה הניידת היא ממס המטפס בלוח.
11.9 ביצוע הניסוי
מהלך הניסוי פשוט וקל לדמיין:
- מטפטפים נקודה זעירה של הדגימה סמוך לתחתית הלוח;
- מציבים את הלוח באנכי בתוך כלי המכיל מעט ממס;
- הממס נספג ומטפס כלפי מעלה בכוח נימיות, ונושא עמו את הדגימה;
- הרכיבים השונים נעים מעלה במהירויות שונות (לפי מקדם החלוקה שלהם), ולכן נפרדים לכתמים נפרדים לאורך הלוח.
בתום ההרצה מתקבל לוח ובו הרכיבים פרוסים בגבהים שונים.
11.10 ערך Rf
כדי לתאר כמותית עד כמה התקדם כל רכיב, מגדירים את ערך ה-Rf (Retention factor):
מאחר שהרכיב לעולם אינו יכול לעבור מרחק גדול יותר מן הממס הנושא אותו, ערך ה-Rf תמיד קטן מ-1. רכיב בעל Rf קרוב ל-1 נע כמעט כמו הממס (K קטן, נטייה חלשה לפאזה הנייחת); רכיב בעל Rf קטן נשאר קרוב לנקודת ההתחלה (K גדול). בתנאים קבועים, ערך ה-Rf אופייני לחומר ומשמש לזיהויו.
11.11 שימושים
- בדיקת טוהר — חומר טהור ייתן כתם יחיד; ריבוי כתמים מסגיר זיהומים;
- מעקב אחר תגובות — דגימות בזמנים שונים מראות אם חומר המוצא נעלם ותוצר חדש מופיע;
- זיהוי איכותי — השוואת Rf לחומר ייחוס ידוע.
11.12 יתרונות ומגבלות
יתרונות: השיטה זולה, מהירה ופשוטה מאוד — אינה דורשת מכשור יקר.
מגבלות: הדיוק מוגבל, והיכולת הכמותית (מדידת ריכוזים מדויקת) חלשה. TLC מצוינת לסקירה איכותית מהירה, אך לניתוח כמותי מדויק נפנה לשיטות העמודה — GC ו-HPLC.
חלק ג’: כרומטוגרפיית גז (GC)
11.13 מתי משתמשים ב-GC?
ב-GC הפאזה הניידת היא גז, ולכן הדגימה חייבת לעבור לשלב הגז כדי לנוע במערכת. מכאן שני תנאים הכרחיים לרכיב המתאים ל-GC:
- שהוא נדיף (מתאדה בקלות);
- שהוא יציב תרמית (אינו מתפרק בחום הדרוש לאידויו).
דוגמאות אופייניות: ממסים, דלקים, ותרכובות אורגניות קטנות. חומרים כבדים, פולריים מאוד או רגישים לחום אינם מתאימים — ועבורם נפנה ל-HPLC.
11.14 מבנה המערכת
מערכת GC בנויה מארבעה חלקים עיקריים, שכל אחד ממלא תפקיד בשרשרת:
- Injector (מזרק) — נקודת הכנסת הדגימה ואידויה;
- Column (עמודה) — מקום ההפרדה בפועל;
- Oven (תנור) — שולט בטמפרטורת העמודה;
- Detector (גלאי) — חש ברכיבים היוצאים ומודד אותם.
11.15 ההזרקה
הדגימה (לרוב כמות זעירה מאוד, נוזלית) מוזרקת אל המזרק החם, ושם היא מתאדה במהירות לשלב הגז. הגז הנושא (gas carrier — בדרך כלל גז אינרטי כמו הליום או חנקן) הוא הפאזה הניידת, והוא סוחף את אדי הדגימה אל תוך העמודה.
11.16 העמודה
העמודה היא לב המערכת — שם מתרחשת ההפרדה. בעמודות נימיות (capillary) מודרניות אורכה עשוי להגיע לעשרות מטרים, מגולגלת לסליל קומפקטי בתוך התנור. הדופן הפנימית מצופה בפאזה הנייחת. ככל שהרכיבים נעים לאורכה, כל אחד מתעכב במידה שונה (לפי מקדם החלוקה והנדיפות), ולכן הם נפרדים ויוצאים מן העמודה בזמנים שונים. עמודה ארוכה יותר נותנת בדרך כלל הפרדה טובה יותר — בדיוק כפי שעיר גדולה יותר (מהדוגמה האינטואיטיבית) מפרידה טוב יותר בין ההולך הישיר לעוצר.
11.17 זמן השהייה
Retention Time (זמן השהייה, או זמן העכבה) הוא הזמן הדרוש לרכיב נתון לעבור את כל הדרך מן ההזרקה ועד הגעתו לגלאי. זהו אחד הפרמטרים החשובים ביותר בכל הכרומטוגרפיה: בתנאים קבועים, זמן השהייה אופייני לכל רכיב, ולכן משמש לזיהויו (בדומה לתפקיד ה-Rf ב-TLC).
11.18 הכרומטוגרמה
תוצאת ההרצה מוצגת כגרף הנקרא כרומטוגרמה:
- ציר X: זמן;
- ציר Y: עוצמת אות הגלאי.
כל פסגה בכרומטוגרמה מייצגת רכיב שיצא מן העמודה — מיקומה על ציר הזמן הוא זמן השהייה שלו, ושטחה קשור לכמותו.
11.19 מה ניתן ללמוד מן הכרומטוגרמה?
- מספר הרכיבים בתערובת (מספר הפסגות);
- זמן השהייה של כל רכיב (זיהוי);
- שטח הפסגה (כמות);
- הריכוז היחסי בין הרכיבים.
11.20 גלאים נפוצים ב-GC
הגלאי “חש” ברכיבים היוצאים מן העמודה והופך אותם לאות חשמלי. שלושה גלאים נפוצים:
FID — Flame Ionization Detector (גלאי יינון בלהבה): הגלאי הנפוץ ביותר ב-GC. הרכיבים נשרפים בלהבה, יוצרים יונים, והזרם הנמדד פרופורציונלי לכמות החומר. רגיש מאוד לתרכובות אורגניות.
TCD — Thermal Conductivity Detector (גלאי מוליכות תרמית): מודד שינוי במוליכות התרמית של הגז הנושא כאשר רכיב עובר דרכו. אוניברסלי (חש כמעט בכל חומר), אך פחות רגיש מ-FID.
MS — Mass Spectrometer: כאשר הגלאי הוא ספקטרומטר מסות, מתקבל GC-MS — שילוב רב-עוצמה שנדון בו בהרחבה בהמשך.
חלק ד’: כרומטוגרפיה נוזלית בביצועים גבוהים (HPLC)
11.21 מדוע נדרשת HPLC?
GC, על כל יתרונותיה, חסומה בפני חלק גדול מן החומרים — אלה שאינם נדיפים. חומרים רבים וחשובים:
- מתפרקים בחימום (ולכן לא ניתן לאדותם);
- כבדים מדי מכדי לעבור לשלב הגז;
- פולריים מדי.
עבור כל אלה GC אינה מתאימה. כאן נכנסת HPLC, שבה הפאזה הניידת היא נוזל ואין כל צורך לאדות את הדגימה.
11.22 מהי HPLC?
High Performance Liquid Chromatography — כרומטוגרפיה נוזלית בביצועים גבוהים. כאן הפאזה הניידת היא נוזל (ממס או תערובת ממסים), הזורם דרך עמודה ארוזה צפוף בחלקיקים זעירים מאוד המהווים את הפאזה הנייחת. מכיוון שהחלקיקים כה קטנים והאריזה צפופה, נדרש לחץ גבוה מאוד כדי לדחוף את הנוזל דרך העמודה — ומכאן ה”P” שבשם (Performance, וגם Pressure בגרסה הוותיקה).
11.23 מבנה המערכת
- Reservoir (מאגר) — מכיל את הממס (הפאזה הניידת);
- Pump (משאבה) — יוצרת את הלחץ הגבוה הדוחף את הממס;
- Injector (מזרק) — מכניס את הדגימה לזרם;
- Column (עמודה) — מקום ההפרדה;
- Detector (גלאי) — חש ברכיבים היוצאים.
11.24 Reverse Phase HPLC (פאזה הפוכה)
השיטה הנפוצה ביותר כיום היא פאזה הפוכה (Reverse Phase). בה הפאזה הנייחת היא הידרופובית (דוחה מים, לרוב שרשראות פחמימן על פני החלקיקים), והפאזה הניידת היא פולרית (לרוב מים מעורבבים עם ממס אורגני כמו מתנול או אצטוניטריל).
ההיגיון: רכיבים פולריים “מרגישים בנוח” בפאזה הניידת הפולרית, נעים מהר ויוצאים מוקדם; רכיבים לא-פולריים (הידרופוביים) נמשכים לפאזה הנייחת ההידרופובית, מתעכבים ויוצאים מאוחר. השם “הפוכה” הוא היסטורי — בשיטות המקוריות (“פאזה רגילה”) היה הסדר הפוך, ופאזה הפוכה הומצאה אחריהן אך הפכה לנפוצה בהרבה.
11.25 Gradient Elution (אלוּאַציית מפל)
בהרצה פשוטה, הרכב הממס קבוע לאורך כל הזמן (isocratic). אך לתערובות מורכבות זה לעיתים אינו מספיק — רכיבים מסוימים יוצאים צפופים בהתחלה ואחרים מתעכבים מאוד בסוף. הפתרון הוא Gradient Elution: משנים בהדרגה את הרכב הממס במהלך ההרצה (למשל, מגבירים בהדרגה את אחוז הממס האורגני). כך אפשר “לזרז” בהדרגה גם את הרכיבים העיקשים, ולקבל הפרדה טובה ומאוזנת לאורך כל הכרומטוגרמה.
11.26 גלאים נפוצים ב-HPLC
UV-Vis — הגלאי הנפוץ ביותר. מודד בליעת אור על ידי הרכיבים היוצאים; מתאים לכל חומר הבולע באזור האולטרה-סגול או הנראה (רבים מן החומרים האורגניים).
Fluorescence (פלואורסצנציה) — גלאי רגיש מאוד, אך מתאים רק לחומרים הפולטים פלואורסצנציה (או שניתן לסמנם כך). משמש כאשר נדרשת רגישות גבוהה במיוחד.
MS — כאשר הגלאי הוא ספקטרומטר מסות, מתקבל LC-MS.
חלק ה’: פרמטרים חשובים בכרומטוגרפיה
לאחר שראינו את השיטות, נאסוף את הפרמטרים הקובעים את איכות ההפרדה. שלושת הראשונים קשורים זה בזה הדוקות.
11.27 זמן השהייה (Retention Time)
הפרמטר הבסיסי ביותר — מתי יצא הרכיב. הוא משמש לזיהוי, אך כדי לדעת אם שני רכיבים אכן נפרדו, אין די בזמני השהייה שלהם; יש להתחשב גם ברוחב הפסגות.
11.28 רוחב הפסגה — ומדוע הפסגות מתרחבות
באופן אידיאלי, רכיב שיצא בזמן מסוים היה אמור להופיע כקו אנכי דק. בפועל כל פסגה היא פעמון בעל רוחב מסוים, והרוחב גדל ככל שהרכיב שוהה זמן רב יותר בעמודה. מדוע?
הסיבה היא שמולקולות של אותו רכיב אינן נעות כולן באותה מהירות בדיוק. גורמים כמו דיפוזיה (פיזור אקראי של המולקולות), הבדלים זעירים במסלולים שכל מולקולה עוברת דרך אריזת העמודה, וקצב חילופי הפאזה — כל אלה גורמים לכך שחלק מן המולקולות מקדים וחלק מפגר מעט. ככל שהמסע ארוך יותר, כך מצטבר הפיזור והפסגה מתרחבת. פסגות צרות הן עדות להפרדה איכותית, ולכן חלק גדול מפיתוח שיטה כרומטוגרפית מוקדש למזעור התרחבות הפסגות.
11.29 רזולוציה (Resolution)
הרזולוציה היא מדד ליכולת ההפרדה בין שני רכיבים סמוכים — עד כמה שתי הפסגות שלהם אכן מובחנות זו מזו. וכאן הנקודה החשובה: הרזולוציה תלויה בשני גורמים יחד, לא באחד בלבד:
- המרחק בין מרכזי שתי הפסגות (הפרש זמני השהייה);
- רוחב הפסגות.
שתי פסגות יכולות להיות רחוקות זו מזו ובכל זאת “להתמזג” אם הן רחבות מדי; ולהפך — שתי פסגות קרובות מאוד יכולות להיות מופרדות היטב אם הן צרות מספיק. כלומר, אין די בכך ששני רכיבים יוצאים בזמנים שונים — צריך שההפרש ביניהם יהיה גדול ביחס לרוחב הפסגות. זו הסיבה שגם 11.28 (רוחב) וגם 11.27 (זמן) חשובים: הרזולוציה היא היחס ביניהם. (הנוסחה הכמותית המדויקת שייכת לקורס מתקדם; לצרכינו די בהבנה ששני הגורמים פועלים יחד.)
11.30 שטח הפסגה
שטח הפסגה (להבדיל ממיקומה) פרופורציונלי לכמות החומר שיצא. זהו הבסיס לכל ניתוח כמותי בכרומטוגרפיה: על ידי כיול מול כמויות ידועות, ניתן לתרגם שטח פסגה לריכוז.
11.31 כרומטוגרפיה איכותית וכמותית
נובע מן האמור לעיל שכרומטוגרפיה משרתת שתי מטרות נפרדות. בניתוח איכותי משתמשים בזמן השהייה כדי לזהות אילו רכיבים נוכחים. בניתוח כמותי משתמשים בשטח הפסגה כדי לקבוע את ריכוזם. לרוב משיגים את שתי המטרות מאותה הרצה.
חלק ו’: שילוב כרומטוגרפיה עם שיטות אחרות
11.32 מדוע לשלב?
כאן נסגר המעגל עם הפרקים הקודמים. לכרומטוגרפיה יש כוח אחד עצום — היא מפרידה מצוין — אך גם חולשה מובנית: לרוב היא אינה מזהה באופן חד-משמעי. זמן שהייה אופייני לחומר, אך שני חומרים שונים עלולים לצאת באותו זמן בדיוק, וזמן השהייה לבדו אינו אומר מהו החומר. לעומת זאת, שיטות כמו MS מזהות מצוין אך מתקשות בתערובות. הצירוף מתבקש: תחילה מפרידים בכרומטוגרפיה, ואז מזהים בשיטה ספקטרוסקופית.
11.33 GC-MS
ההפרדה נעשית ב-GC, והזיהוי ב-MS: כל רכיב היוצא מעמודת ה-GC בזמן השהייה שלו נכנס מיד ל-MS ומזוהה לפי הספקטרום שלו. זהו אחד הכלים החזקים ביותר באנליזה אורגנית, ומתאים לחומרים נדיפים.
11.34 LC-MS
שילוב HPLC עם MS, להפרדה וזיהוי של חומרים שאינם נדיפים. מתאים במיוחד ל:
- תרופות;
- פולימרים;
- ביומולקולות;
- מזהמים.
11.35 שילובים נוספים
ניתן לחבר כרומטוגרפיה כמעט לכל שיטת זיהוי שלמדנו, לפי הצורך:
- GC-FTIR — הפרדה ואחריה זיהוי קבוצות פונקציונליות;
- LC-NMR — הפרדה ואחריה קביעת מבנה מפורטת;
- LC-ICP-MS — הפרדה ואחריה ניתוח יסודי (שילוב המנצל את ICP-MS שכבר הכרתם בפרק קודם, כאן כגלאי יסודי לרכיבים מופרדים).
המכנה המשותף לכולם זהה: הכרומטוגרפיה מפרידה, והשיטה השנייה מזהה.
חלק ז’: כרומטוגרפיה בחקר חומרים
11.36 פולימרים
- מונומרים שיוריים (שלא הגיבו) — חשובים לבטיחות ולאיכות;
- תוספים (additives);
- חומרי ייצוב (stabilizers).
11.37 ציפויים
- ממסים שיוריים;
- פלסטיסייזרים (מרככים);
- מזהמים.
11.38 קורוזיה
- מזהמים אורגניים בסביבת הקורוזיה;
- מעכבי קורוזיה (corrosion inhibitors) — זיהוים ומעקב אחר ריכוזם.
11.39 בקרת איכות
- זיהוי חומרים ואימותם;
- השוואה בין אצוות ייצור (batch-to-batch);
- איתור זיהומים.
חלק ח’: יתרונות ומגבלות
11.40 יתרונות
- הפרדה יעילה מאוד של תערובות;
- רגישות גבוהה;
- התאמה לתערובות מורכבות (עשרות ומאות רכיבים);
- אפשרות חיבור לשיטות זיהוי אחרות (MS, FTIR, NMR).
11.41 מגבלות
- דורשת פיתוח שיטה — בחירת עמודה, ממס, טמפרטורה ותנאים, לעיתים תהליך ארוך;
- זמן עבודה ארוך יחסית להרצה;
- לא כל חומר מתאים לכל סוג כרומטוגרפיה (נדיפות, פולריות, יציבות תרמית מגבילות).
11.42 מה כרומטוגרפיה יודעת ומה אינה יודעת?
נמקם את הכרומטוגרפיה ביחס לשאר הכלים. היא מצטיינת ב:
- הפרדת רכיבים מתערובת;
- קביעת ריכוזים (ניתוח כמותי);
- סיוע בזיהוי (דרך זמן השהייה).
אך בדרך כלל היא אינה מספקת:
- מבנה גבישי (XRD);
- מורפולוגיה ותמונת פני שטח (SEM);
- מידע ישיר על קשרים כימיים (FTIR, Raman) או על מבנה מולקולרי (NMR, MS).
לכן הכרומטוגרפיה כמעט לעולם אינה עומדת לבדה: היא שלב ההכנה וההפרדה שקודם לזיהוי, וכוחה האמיתי מתגלה בשילוב עם השיטות הספקטרוסקופיות שלמדנו.
סיכום
כרומטוגרפיה היא משפחת שיטות הפרדה המבוססת על עיקרון אחד פשוט: רכיבים שונים מתחלקים באופן שונה בין פאזה נייחת לפאזה ניידת, ולכן נעים במהירויות שונות ונפרדים זה מזה.
שלוש השיטות המרכזיות שראינו הן TLC (פשוטה, איכותית, מהירה), GC (לחומרים נדיפים ויציבים תרמית) ו-HPLC (לחומרים שאינם נדיפים). איכות ההפרדה נמדדת ברזולוציה, התלויה הן במרחק בין הפסגות והן ברוחבן.
כוחה הגדול של הכרומטוגרפיה מתממש בעיקר בשילוב עם שיטות זיהוי: הכרומטוגרפיה מפרידה, וה-MS (או FTIR, NMR) מזהה. צירופים כמו GC-MS ו-LC-MS הם בין הכלים החזקים ביותר באנליזה המודרנית.
בפרק הבא נעבור לסוג מידע שונה לחלוטין: לא הרכב ולא מבנה, אלא התנהגות החומר בעת חימום — תחום האנליזה התרמית.
